产品货号：
YTB4094
中文名称：
植物样本直扩PCR Mix
英文名称：
2×LoadEasy Plant Direct PCR Mix
产品规格：
20μL×100T|20μL×500T
发货周期：
1～3天
产品价格：
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本制品是一种使用特别便捷的专门用于植物样品的2倍浓度的PCR预混液，并且PCR结束后可以直接上样电泳无需添加上样缓冲液。本制品含有耐叶绿素的PlantTaq DNA聚合酶，这是一种经过基因工程改造的非常高效的适用于植物样品直接PCR检测的耐热DNA聚合酶。
本制品提供了一对阳性对照引物，便于确认PCR检测效果。该对引物是多种植物的通用引物，可以扩增多数植物叶绿体中高度保守的IRB18基因的297bp DNA片段。
植物叶片等比较柔嫩的组织样品基因组DNA中目的基因的直接扩增、基因分型(如基因缺失等)，以及基因敲除或转基因植物基因型分析。
- 对于植物叶片等样品可以直接PCR检测，无须提取DNA。本制品对玉米、丝瓜、甜椒、豆角、黄豆、辣椒、黄瓜、茄子、番茄等植物样品中的叶绿素、多糖、多酚等各种PCR抑制剂表现出超强的抗性，对于新鲜采集的、4℃保存或低温冻存的这些植物的叶片、嫩种子等，都无需进行DNA提取纯化，可以直接用于PCR扩增目的DNA。
- 所需样品少，耐受能力高。本制品用于20μL的PCR扩增体系时，通常仅加入0.1～1mm直径叶片即可顺利完成PCR检测。
- 本制品扩增产物可直接进行TA克隆。本制品扩增获得的PCR产物带有3'-dA overhangs的粘性末端，可直接用于和T载体连接进行TA克隆。
本制品用于植物叶片检测的效果参考图1。图中可见，本制品对多种常见植物叶片都有很好的PCR扩增效果。
图1．使用本制品扩增图中所示不同植物叶片中目的基因的检测效果图。使用2×LoadEasy Plant Direct PCR Mix及本制品提供的Control primer mix，在PCR体系中直接加入不同植物叶片，用于扩增IRB18基因的297bp DNA片段后的电泳效果图。M,DNA marker (0.2～12kb,12 bands)；1，豆角(Cowpea)；2，黄豆(Soybean)；3，丝瓜(Sponge gourd)；4，甜椒(Capsicum)；5，玉米(Maize)；6，黄瓜(Cucumber)；7，辣椒(Pepper)；8，茄子(Eggplant)；9，番茄(Tomato)。
本制品扩增不同长度目的基因的效果参考图2。图中可见，本制品以番茄叶片为模板可以直接PCR扩增出长达5kb的DNA片段。
图2．使用本制品直接以番茄叶片为模板扩增不同长度的目的基因的效果图。M,DNA marker (0.2～12kb,12 bands);1,IRB18(297bp)；2,actin(693bp)；3,rbcL(1201bp)；4,rpoC2(2069bp)；5,rpoC2(3079bp)；6,rpoC2(3942bp)；7,rpoC2(5000bp)。
酚氯仿抽提可以使2×LoadEasy Plant Direct PCR Mix中含有的PlantTaq DNA聚合酶失活。
| 组分 | 20μL×100T | 20μL×500T |
| 2×LoadEasy Plant Direct PCR Mix | 1mL | 5×1mL |
| Control primer mix (10μM each) | 25μL | 125μL |
保存：-20℃，适当避免反复冻融。
本制品如果用于50μL的PCR反应体系，两种包装的本制品分别足够用于40个和200个反应；如果用于20μL的PCR反应体系，两种包装的本制品分别足够用于100个和500个反应。
- 由于PCR反应非常灵敏，在使用2×LoadEasy Plant Direct PCR Mix时请注意避免微量待扩增DNA的污染，并尽量考虑设置不加模板的空白对照以确认是否有待扩增DNA的污染。
- 设置PCR反应体系时，20μL和50μL PCR体系中植物样品的推荐用量分别为0.1～1mm和0.3～3mm直径叶片或类似大小其它比较柔嫩的植物组织，可以直接添加到PCR体系中，无需进行任何额外处理。经测试本制品适用于柔嫩新鲜种子的直接PCR，但不适用于干硬种子的直接PCR。
- PCR反应结束之后，酌情3000～5000g离心3～5min以沉淀植物组织碎片，便于吸取上清用于电泳分析等。
- 需自备Nuclease-Free Water。推荐选购无菌无酶超纯水(货号：YT998)。
- PCR反应体系的设置：
- 融解并混匀2×LoadEasy Plant Direct PCR Mix和Control primer mix (10μM each)，置于冰浴上或冰盒内。
- 参考下表在冰浴上设置PCR反应体系：
试剂 20μL体系 50μL体系 终浓度 Nuclease-Free Water 9μL 22.5μL - 2×LoadEasy Plant Direct PCR Mix 10μL 25μL 1X 引物混合物(10μM each) 1μL 2.5μL 0.5μM each 植物样品 0.1～1mm直径 0.3～3mm直径 - 总体积 20μL 50μL - - 模板使用量：作为PCR模板的植物组织用量，对于20μL和50μL PCR反应体系，植物样品的推荐用量分别为0.1～1mm和0.3～3mm直径叶片或类似大小其它比较柔嫩的植物组织。如果模板为植物种子，尽量使用鲜嫩的植物种子。用干净的解剖刀去掉种子外壳，剪下直径约0.5～2mm的组织直接放入PCR管内；若种子太小，如番茄种子，可直接使用1-2粒完整的种子放入PCR管内进行扩增。50μL PCR体系，植物叶片或是种子直径不宜超过3mm，太多模板易造成PCR抑制成分偏多，影响PCR效果。推荐取两份植物组织样品进行平行的PCR实验，以降低取样的不稳定性。为确保取样的均一性，建议使用专用的打孔器或解剖刀进行取样，并注意防止取样过程中的交叉污染。每一次取样，可以用2%的次氯酸钠溶液清洗打孔器或解剖刀。对于高GC含量的PCR扩增，可以尝试向PCR体系中加入终浓度1～10% (体积百分比)的DMSO。
- 引物浓度：通常引物的终浓度为0.5μM时可获得良好的检测效果，也可以根据情况在0.1～1.0μM范围内调整引物的终浓度。扩增效率不高的情况下，可提高引物的浓度；发生非特异性反应时，可降低引物浓度。
- 模板使用量：作为PCR模板的植物组织用量，对于20μL和50μL PCR反应体系，植物样品的推荐用量分别为0.1～1mm和0.3～3mm直径叶片或类似大小其它比较柔嫩的植物组织。如果模板为植物种子，尽量使用鲜嫩的植物种子。用干净的解剖刀去掉种子外壳，剪下直径约0.5～2mm的组织直接放入PCR管内；若种子太小，如番茄种子，可直接使用1-2粒完整的种子放入PCR管内进行扩增。50μL PCR体系，植物叶片或是种子直径不宜超过3mm，太多模板易造成PCR抑制成分偏多，影响PCR效果。推荐取两份植物组织样品进行平行的PCR实验，以降低取样的不稳定性。为确保取样的均一性，建议使用专用的打孔器或解剖刀进行取样，并注意防止取样过程中的交叉污染。每一次取样，可以用2%的次氯酸钠溶液清洗打孔器或解剖刀。对于高GC含量的PCR扩增，可以尝试向PCR体系中加入终浓度1～10% (体积百分比)的DMSO。
- 用移液器轻轻吹打混匀或轻微Vortex混匀，室温离心数秒，使液体和待检测植物组织积聚于管底。
- 如果所使用的PCR仪有热盖则省略本步骤。如果PCR仪没有热盖，则在管内滴入一滴矿物油(货号：YT399)。
- 把设置好的PCR反应体系置于PCR仪上，开始PCR反应。
- 融解并混匀2×LoadEasy Plant Direct PCR Mix和Control primer mix (10μM each)，置于冰浴上或冰盒内。
- PCR反应参数的设置可以参考如下表格：
步骤 循环数 温度 时间 说明 1 1 94℃ 5min 起始变性 2 30～40 94℃ 30sec 变性 55℃ 30sec 退火 68℃ 2min/kb 延伸 3 1 68℃ 10min 最终延伸 4 1 4℃ 长时间保持 临时存放 - 起始变性(94℃，5min)可以使植物组织样品裂解，释放出可用于PCR扩增的基因组DNA。
- 需根据每次反应的模板、引物、PCR产物的长度和GC含量等适当优化PCR反应条件，包括温度、时间和循环数等。
- 对于初次进行的PCR，为尽量确保可以扩增出预期的PCR产物，可以把循环数设置为35。
- 起始变性(94℃，5min)可以使植物组织样品裂解，释放出可用于PCR扩增的基因组DNA。
- PCR产物非常少或没有特异性条带。
- 引物设计不佳是PCR过程中最常见的问题。请选择适当的引物设计软件进行引物设计，注意引物的GC含量、二级结构、二聚体、退火温度、长度、特异性等方面的问题。在加入酶切位点等的引物中，一定要注意加入酶切位点等后整条引物的GC含量、二级结构、二聚体、退火温度、长度、特异性等方面的问题。在原有引物效果不佳的情况并且阳性对照引物可以正常工作的情况下，可以考虑更换引物。
- 待扩增片段GC含量偏高。向PCR体系中尝试加入适合扩增高GC含量DNA片段的试剂。
- 目的片段过长。尽管PlantTaq DNA聚合酶可以扩增最长达5kb的DNA片段，但大多数时候更适合扩增2～3kb以下的片段。对于过长的目的片段的扩增，需要适当优化引物和PCR反应参数。
- 引物的二级结构、引物二聚体或引物偏短会导致退火效果不佳。此时可以采用Touch down等方法进行退火，通常采用从65℃逐步缓慢降温到55℃或50℃的方法，使退火更加充分。
- 退火温度不佳，需要优化。如果有温度梯度PCR仪，则可以设置退火的温度梯度，摸索退火的最佳温度。如果没有温度梯度PCR仪，则可以通过多次PCR反应摸索最佳的退火温度。
- 延伸时间不足。可按照每1kb片段延伸2分钟进行设置，对于较难扩增的片段可以设置为每1kb片段延伸3～4分钟。
- 在不同PCR仪上进行PCR反应，避免有时PCR仪出现问题。
- 循环数不足，适当延长PCR的循环数。通常循环数最高不必超过40，常用的循环数范围为30～40。
- 模板用量偏少，可以在耐血体积范围内适当加大样品用量，或采用巢式PCR (nested PCR)或二次PCR。巢式PCR即为在原先设计的PCR引物内侧再设计一对PCR引物，然后对第一次PCR产物进行稀释后再进行一次PCR扩增，这样一方面可以起到扩增作用，同时也可以从第一次PCR产物中扩增出特异性条带。二次PCR则为比较简单地用原有引物对第一次PCR产物进行稀释后再进行一次PCR扩增，可以起到扩增作用，但不能去除非特异性条带。
- 对PCR引物进行脱盐甚至PAGE胶或HPLC纯化。
- 当产生较多非特异性条带时，可以适当提高退火温度。
- 注意设置适当的阳性对照和阴性对照通常会对于实验结果的判断有很大帮助。
- 引物设计不佳是PCR过程中最常见的问题。请选择适当的引物设计软件进行引物设计，注意引物的GC含量、二级结构、二聚体、退火温度、长度、特异性等方面的问题。在加入酶切位点等的引物中，一定要注意加入酶切位点等后整条引物的GC含量、二级结构、二聚体、退火温度、长度、特异性等方面的问题。在原有引物效果不佳的情况并且阳性对照引物可以正常工作的情况下，可以考虑更换引物。
- 杂带较多或条带弥散
- 退火温度提高2～5℃。
- 减少植物组织样品的用量。
- 在室温配制PCR体系容易产生非特异性条带。推荐在冰浴上配制PCR反应体系。
- 如果模板的GC含量过高，需要考虑加入适合扩增高GC含量DNA片段的试剂。
- 适当缩短延伸时间。
- 退火温度提高2～5℃。
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